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      2. 分離培養(yǎng)及鑒定骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的方法探析論文

        時(shí)間:2022-09-30 02:39:18 論文 我要投稿
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        分離培養(yǎng)及鑒定骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的方法探析論文

          骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)也被稱為間質(zhì)祖細(xì)胞,由于其巨大的增殖和多向分化潛能,被認(rèn)為是再生醫(yī)學(xué)、基因治療和細(xì)胞治療的理想種子來(lái)源,已被廣泛進(jìn)行研究[1-3].目前,BMSCs在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床應(yīng)用上取得了巨大的成果,在骨、軟骨、肌腱、神經(jīng)膠質(zhì)修復(fù)、心臟疾病、心肌梗塞、肝臟損傷等方面取得了重大突破[4-6],并且可避免胚胎干細(xì)胞和異基因干細(xì)胞治療所涉及的倫理道德和免疫排斥問(wèn)題,有利于細(xì)胞移植。但是骨髓中的BMSCs含量極少,約占骨髓全細(xì)胞的0.001%~0.010%[7];因此,需要在體外分離純化、培養(yǎng)擴(kuò)增來(lái)滿足臨床應(yīng)用和實(shí)驗(yàn)研究。研究表明,不同分離方法和首次換液方式對(duì)BMSCs的增殖培養(yǎng)有很大的影響[8].本試驗(yàn)通過(guò)觀察2種不同分離方法和不同首次換液時(shí)間對(duì)兔BMSCs生物活性的影響,旨在建立一種有效的分離培養(yǎng)及鑒定BMSCs的方法,以便獲得大量、高純度、高活性、培養(yǎng)周期短的BMSCs,為下一步研究和臨床實(shí)驗(yàn)提供基礎(chǔ)。

        分離培養(yǎng)及鑒定骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的方法探析論文

          1 材料與方法

          1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物1月齡雄性新西蘭大耳白兔1只,由河南省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。

          1.2主要試劑和儀器胎牛血清(北京四季青);DMEM-F12(Gibco);胰蛋白酶(北京拜爾迪生物公司);DMSO(Gibco);紅細(xì)胞裂解液(北京賽馳生物技術(shù)有限公司);生物素標(biāo)記山羊抗兔IgG、HRP標(biāo)記鏈霉親和素、DAB顯色試劑盒、改良型蘇木素(北京華肽先鋒);兔抗兔CD34、CD44、CD99抗體(北京博奧森);封閉山羊血清(北京博奧森)。

          HF151UV型CO2培養(yǎng)箱(Heal Force);倒置顯微鏡(Leica);800型離心機(jī)、85-2恒溫磁力攪拌器:金壇市大地自動(dòng)化儀器廠;數(shù)碼相機(jī):日本佳能IXUS 980IS;電子天平:METTLER TOLEDO AL104;超凈工作臺(tái):AIR TECH;FX101-2型電熱鼓風(fēng)干燥箱:上海樹(shù)立儀器儀表有限公司;pH計(jì):上海雷磁儀器廠。

          1.3 BMSCs的提取用陸眠寧(846)將1月齡新西蘭大耳白兔麻醉,腿部去毛消毒,無(wú)菌條件下分離股骨、脛骨,剔除脂肪和肌肉,PBS液反復(fù)沖洗,剪斷兩側(cè)干骺端,盡量多保留干骺端,DMEM-F12培養(yǎng)液反復(fù)沖洗骨髓腔于A、B兩個(gè)10mL的離心管內(nèi),直至骨髓腔發(fā)白,1 000r/min離心5min,棄上清。

          1.4全骨髓貼壁法A管用PBS重懸細(xì)胞,1 000r/min離心5min洗滌2次,棄上清。吸取3mL含10%FBS的DMEM-F12(1∶100雙抗)培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,接種至3個(gè)25cm2培養(yǎng)瓶,補(bǔ)足培養(yǎng)液至5mL,輕柔吹打均勻。置于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。以后每3d換液1次,待細(xì)胞生長(zhǎng)融合至80%時(shí)傳 代 培 養(yǎng)。 先 棄 去 舊 培 養(yǎng) 液,PBS液 浸 洗。0.25%胰蛋白酶+0.02%EDTA,37℃條件下孵育3min,含血清的DMEM-F12終止消化。以1∶2的比例傳代培養(yǎng),每3d換液1次。每天在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。

          1.5紅細(xì)胞裂解法B管加入1mL紅細(xì)胞裂解液重懸細(xì)胞,靜置1~3min,待液體由紅色變?yōu)榘咨螅?入5 mL PBS液,1 000r/min離 心2次,5min/次,棄 上 清。 吸 取3 mL含10% FBS的DMEM-F12(1∶100雙抗)培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,接種至3個(gè)25cm2培養(yǎng)瓶,補(bǔ)足培養(yǎng)液至5mL,輕柔吹打均勻。置于37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。

          2d后首次換液,以后每3d換液1次,待細(xì)胞生長(zhǎng)融合至80%時(shí)傳 代 培 養(yǎng)。 先 棄 去 舊 培 養(yǎng) 液,PBS液 浸 洗。0.25%胰蛋白酶+0.02%EDTA,37℃條件下孵育3min,含血清的DMEM-F12終止消化。以1∶2的比例傳代培養(yǎng),每3d換液1次。每天倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。

          1.6兔BMSCs細(xì)胞活性檢測(cè)及生長(zhǎng)曲線繪制培養(yǎng)48h時(shí),各取一瓶細(xì)胞,棄去培養(yǎng)基,用PBS沖洗2遍,倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞。0.25%胰蛋白酶+0.02%EDTA消化后,0.4%臺(tái)盼藍(lán)染色,血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)活細(xì)胞(未著色)和死細(xì)胞(著色細(xì)胞)。分別計(jì)算出2種不同分離方法的細(xì)胞活性。上述試驗(yàn)重復(fù)3次。

          選取生長(zhǎng)良好的P1、P3和P8代細(xì)胞,以2.0×104個(gè)/孔,接種于24孔培養(yǎng)板中,每孔1mL,每3d換液1次,每隔1d取3孔,消化后計(jì)數(shù),取其平均值為當(dāng)天的細(xì)胞數(shù),連測(cè)8d,以培養(yǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo),細(xì)胞數(shù)為縱坐標(biāo),繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。

          1.7首次換液時(shí)間對(duì)兔BMSCs的影響將用紅細(xì)胞裂解法分離得到的兔BMSCs按首次換液時(shí)間隨機(jī)分為4組:12h換液組、24h換液組、48h換液組、72h換液組,以后每3d換液1次,記錄傳代前各組0~3代各代培養(yǎng)時(shí)間,各代細(xì)胞均保留3瓶。

          1.8細(xì)胞免疫組化鑒定兔BMSCs收集紅細(xì)胞裂解法的P3代細(xì)胞,制備細(xì)胞爬片,常規(guī)SABC免疫組織 化 學(xué) 方 法 檢 測(cè) 表 面 抗 原CD34、CD、CD45、CD90的表達(dá)。

          1.9統(tǒng)計(jì)學(xué)處理所得數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,應(yīng)用SPSS16.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行處理,采用單因素方差分析(one-way ANOVA),用Microsoft Excel軟件作圖。

          2 結(jié)果

          2.1不同分離方法對(duì)兔BMSCs形態(tài)和生長(zhǎng)的影響

          剛接種時(shí),2種不同分離方法所得的原代細(xì)胞在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞呈圓形,大小一致,折光性強(qiáng),不容易區(qū)分。培養(yǎng)48h后,A、B兩組細(xì)胞均可看見(jiàn)有圓形、短梭形、多角形細(xì)胞貼壁。

          B組貼壁細(xì)胞較A組細(xì)胞多(圖1)。臺(tái)盼藍(lán)染色檢測(cè)細(xì)胞活性全骨髓貼壁法(A組)為90%,紅細(xì)胞裂解法(B組)為96%.隨著培養(yǎng)的繼續(xù),大量細(xì)胞貼壁,并出現(xiàn)典型的BMSCs細(xì)胞集落,緊密排列。

          A組細(xì)胞生長(zhǎng)較緩慢,所得細(xì)胞純度較低;B組細(xì)胞生長(zhǎng)較快,純度較高。原代細(xì)胞達(dá)到傳代的時(shí)間A組為10.2d,B組為7.2d,差異顯著(P<0.05)。B組細(xì)胞P3代細(xì)胞呈旋渦狀或放射狀生長(zhǎng),細(xì)胞形態(tài)大小均一(圖2).

          2.2兔BMSCs生長(zhǎng)曲線繪制

          通過(guò)細(xì)胞計(jì)數(shù)法繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線,對(duì)兔BMSCs的生長(zhǎng)特性進(jìn)行鑒定。結(jié)果顯示,P1、P3、P8代細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中,細(xì)胞生長(zhǎng)具有相似的特點(diǎn):1~2d細(xì)胞處于潛伏期;3~6d細(xì)胞處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期;6~8d生長(zhǎng)逐漸減慢,開(kāi)始進(jìn)入平臺(tái)期(圖3)。傳代細(xì)胞生長(zhǎng)相對(duì)穩(wěn)定,隨著傳代次數(shù)的增加,細(xì)胞會(huì)出現(xiàn)衰老的特征,增殖速度減慢。

          2.3兔BMSCs的鑒定

          結(jié)果顯示,CD44、CD90抗原表達(dá)陽(yáng)性,CD34抗原表達(dá)陰性(圖4),符合BM-SCs表面分子標(biāo)記特征。

          2.4首次換液時(shí)間對(duì)兔BMSCs培養(yǎng)周期的影響紅細(xì)胞裂解法分離兔BMSCs,分別在12,24,48,72h首次換液,結(jié)果(表1)顯示,24h換液組P0、P1、P2、P3代以及總時(shí)間的細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間與其他各組比較差異極顯著(P<0.01),表明24h首次換液可縮短細(xì)胞培養(yǎng)周期。

          3 討論

          骨髓中BMSCs的含量很低,一般為0.001%~0.010%,其數(shù)量和生長(zhǎng)能力與年齡呈顯著負(fù)相關(guān),想要在臨床實(shí)踐中利用BMSCs,就必須實(shí)現(xiàn)其在體外的分離培養(yǎng)和擴(kuò)增。目前,常用的BMSCs的分離和純化方法有:全骨髓貼壁法、紅細(xì)胞裂解法、密度梯度法、免疫磁珠分選法和流式細(xì)胞術(shù)分選法,后2種方法篩選BMSCs的分選效率和純度均較高,但是對(duì)實(shí)驗(yàn)條件和設(shè)備要求較高,費(fèi) 用 昂 貴,并 且BMSCs表面缺乏特異性標(biāo)志,在具體操作過(guò)程中可造成細(xì)胞的損傷和死亡,所以較少使用[9].密度梯度法由于分離液往往對(duì)BMSCs有一定的損傷,且離心會(huì)丟失大量的細(xì)胞,對(duì)細(xì)胞活性有影響,因此應(yīng)用受到很大限制[10].本試驗(yàn)通過(guò)比較全骨髓貼壁法和紅細(xì)胞裂解法,發(fā)現(xiàn)2種分離方法均可得到較均一的長(zhǎng)梭形細(xì)胞,聚集成旋渦狀均勻生長(zhǎng)。但是紅細(xì)胞裂解法分離得到的BMSCs在48h時(shí)貼壁細(xì)胞顯著多于全骨髓貼壁法,并且細(xì)胞活性較高,細(xì)胞密度達(dá)到80%融合,首次傳代時(shí)間也較短。這可能是因?yàn)槿撬栀N壁分離法保留了造血干細(xì)胞和其他雜細(xì)胞,在體外培養(yǎng)過(guò)程中混雜的細(xì)胞會(huì)對(duì)BMSCs的生長(zhǎng)及貼壁產(chǎn)生影響,所得BMSCs純度和細(xì)胞活性均較低;而紅細(xì)胞裂解液的有效成分是氯化銨,能夠利用紅細(xì)胞的滲透脆性特異性的破壞無(wú)核紅細(xì)胞膜而去除紅細(xì)胞和血小板,并且對(duì)有核細(xì)胞無(wú)影響,從而去除骨髓中含量最高的細(xì)胞成分,經(jīng)紅細(xì)胞裂解液處理后,減小了雜細(xì)胞對(duì)其貼壁的影響,為BMSCs貼壁保留了空間,有利于BMSCs的早期貼壁[11],所得細(xì)胞純度高,且細(xì)胞活力不受影響。因此,利用紅細(xì)胞裂解法,能夠在較短的時(shí)間里獲得大量的高純度、高活性的目的細(xì)胞,是一種有效的分離純化BMSCs的方法。

          有研究表明,首次換液時(shí)間對(duì)BMSCs的生殖增長(zhǎng)有一定的影響。原代首次換液時(shí)間過(guò)早,由于骨髓沖洗液中其他細(xì)胞分泌滋養(yǎng)BMSCs的生長(zhǎng)因子等多種有益成分丟失,貼壁細(xì)胞數(shù)量減少,細(xì)胞生長(zhǎng)緩慢,細(xì)胞培養(yǎng)周期延長(zhǎng);原代首次換液時(shí)間過(guò)晚,雜質(zhì)貼壁緊密,細(xì)胞代謝產(chǎn)物等有害成分增多,造血干細(xì)胞分泌的生長(zhǎng)因子使BMSCs出現(xiàn)分化等,從而導(dǎo)致細(xì)胞增殖周期延長(zhǎng)。本試驗(yàn)分別在12,24,48,72h首次換液,24h換液組,首次傳代時(shí)間及細(xì)胞培養(yǎng)總周期與其他各組比較,差異有顯著性意義,能顯著縮短細(xì)胞培養(yǎng)時(shí)間,因此,培養(yǎng)24h首次換液為最佳首次換液時(shí)間。

          BMSC目前還沒(méi)有發(fā)現(xiàn)特異性的表面標(biāo)記物,其鑒定尚無(wú)統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)。

          BMSC的表面抗原具有非專一性,表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞、間質(zhì)細(xì)胞、表皮細(xì)胞和肌肉細(xì)胞的表面標(biāo)志,它包括(1)粘附分子CD44、CD105、CD166、CD54、CD102等;(2)整 合 素 家 族 成 員CD29、CD104、CD49a等;(3)其他CD90等[12-14].不表達(dá)造血干細(xì)胞表面標(biāo)志,如CD34、CD45、CD11b、CD11a等[15-16].BMSCs,結(jié) 果 顯 示,BMSCs陽(yáng) 性 表 達(dá)CD90和CD44,造 血 干 細(xì) 胞 標(biāo) 志CD34呈 陰 性 表 達(dá),符 合BMSCs的表面標(biāo)志物特征,證實(shí)我們體外分離培養(yǎng)的細(xì)胞為純化的BMSCs.

          綜上所述,通過(guò)紅細(xì)胞裂解液法分離得到的兔BMSCs生長(zhǎng)增殖旺盛,生物學(xué)性狀穩(wěn)定,于培養(yǎng)24h首次換液可顯著縮短細(xì)胞的培養(yǎng)周期,便于后續(xù)的試驗(yàn)研究。

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